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當前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-常量法酯酶系列BC5400-50T/24S抗酒石酸酸性磷酸酶活性檢測試劑盒 酯酶

抗酒石酸酸性磷酸酶活性檢測試劑盒 酯酶
產(chǎn)品簡介:

抗酒石酸酸性磷酸酶活性檢測試劑盒 酯酶
儲存條件
-20℃
有效期
6個月
單位

英文名稱
Tartrate Resistant Acid Phosphatase(TRAP)Activity Assay Kit
檢測方法
可見分光光度法 Spectrophotometer
規(guī)格
50T/24S

產(chǎn)品型號:BC5400-50T/24S

更新時間:2024-04-19

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :1192

服務(wù)熱線

010-50973130

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產(chǎn)品介紹

抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)活性檢測試劑盒說明書

可見分光光度法

貨號BC5400

規(guī)格50T/24S

產(chǎn)品內(nèi)容使用前請認真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

提取液

液體30 mL×1

2-8℃保存

試劑一

液體8mL×1

2-8℃保存

試劑二

粉劑×1

2-8℃保存

試劑三

粉劑×1

-20℃保存

試劑四

粉劑×1

2-8℃保存

試劑五

液體0.5mL×1

2-8℃保存

試劑六

液體3.5mL×1

2-8℃保存

試劑七

液體3.5mL×1

2-8℃保存

試劑八

液體40mL×1

2-8℃保存

標準品

液體1mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1、 試劑二:臨用前加入3.5mL試劑一,充分溶解。如果試劑溶解不充分,可將試劑加熱至50℃促進其溶解。未用完的試劑2-8℃保存可以保存8周。

2、 試劑三:臨用前加入3.5mL蒸餾水,充分溶解,未用完的試劑-20℃保存可以保存4周,避免反復(fù)凍融。

3、 試劑四:臨用前加入5.5mL蒸餾水溶解,未用完的試劑2-8℃保存可以保存4周。

4、 試劑五:臨用前根據(jù)樣本數(shù)量按照試劑五:蒸餾水=1:9的比例配制,現(xiàn)用現(xiàn)配。

5、 標準品:5μmol/mL 酚標準液。臨用前取100μL5μmol/mL 酚標準液EP管中,加入700μL蒸餾水充分混合,配制成0.625 μmol/mL酚標準溶液。

產(chǎn)品說明

抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)是破骨細胞的特征性酶TRAP參與骨基質(zhì)中固體鈣磷礦化底物的降解,其表達和分泌與破骨細胞功能密切相關(guān)。

在酒石酸存在的情況下,抗酒石酸酸性磷酸酶的活性不被抑制,而其他的酸性磷酸酶的活性則會受到抑制。酸性條件下,抗酒石酸酸性磷酸酶催化PNP P生成對硝 基苯*。對硝 **酚在堿性條件下呈黃色,可以在400nm波長下檢測吸光度。產(chǎn)物黃色越深,說明抗酒石酸酸性磷酸酶活性越高,反之則酶活性越低。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計、低溫離心機、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、分析天平、可調(diào)式移液器、1mL玻璃比色皿研缽/勻漿器/超聲破碎儀、蒸餾水和冰。

 

操作步驟

一、樣本處理(可適當調(diào)整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)

1、組織:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)15~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。

2、細菌或培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內(nèi),離心后棄上清;按照細菌或細胞數(shù)量(104個):提取液體積(mL)為500~10001的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率200W,超聲3s,間隔10s,重復(fù)30次);8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。

3、液體:直接測定。(若溶液呈現(xiàn)渾濁,則離心取上清后再測定)

二、測定步驟

1、 可見分光光度計預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至400nm,蒸餾水調(diào)零。

2、操作表:(在EP管中加入下列試劑)

試劑名稱(μL

測定管

對照管

標準管

標準空白管

樣本

50

50

-

-

標準品

-

-

50

-

蒸餾水

-

50

-

50

試劑一

50

50

50

50

試劑二

50

50

50

50

試劑三

50

-

50

50

試劑四

50

50

50

50

試劑五

50

50

50

50

試劑六

50

50

50

50

試劑七

50

50

50

50


37℃避光反應(yīng)1小時

-

-

試劑八

600

600

600

600

混勻后,測定在400nm處的吸光度,記作A測定,A對照,A標準,A標準空白?A測定=A測定-A對照,?A標準=A標準-A標準空白。(標準管和標準空白管只需做1-2次。)

三、TRAP活性計算

(1) 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生1nmol酚定義為一個酶活力單位。

TRAP活性(U/mg prot=(?A測定×C標準÷?A標準) ×V÷Cpr×V÷T×103×F=10.42×?A測定÷?A標準÷Cpr×F

(2) 按樣本質(zhì)量計算

單位的定義:每g組織每分鐘催化產(chǎn)生1nmol酚定義為一個酶活力單位。

TRAP活性(U/g 質(zhì)量)= (?A測定×C標準÷?A標準) ×V÷W÷V樣總×V÷T×103×F=10.42×?A測定÷?A標準÷W×F

(3) 按細菌或細胞數(shù)目計算

單位的定義:每1萬個細菌或細胞每分鐘催化產(chǎn)生1nmol義為一個酶活力單位。

TRAP活性(U/104 cell= (?A測定×C標準÷?A標準) ×V÷N÷V樣總×V÷T×103×F=10.42×?A測定÷?A標準÷N×F

 

(4) 按血清(漿)等液體體積計算

單位的定義:每mL血清(漿)等液體每分鐘催化產(chǎn)生1nmol義為一個酶活力單位。

TRAP活性(U/mL= (?A測定×C標準÷?A標準) ×V÷V÷T×103×F=10.42×?A測定÷?A標準×F

C標準:酚標準液,0.625 μmol/mL ;V:反應(yīng)體系中加入的樣本體積,0.05mL;V樣總:加入的提取液體積,1mLT:反應(yīng)時間,60min;Cpr:蛋白質(zhì)濃度,mg/mLW:樣本質(zhì)量,g;500:細胞或細菌數(shù)目,500萬;103:單位換算系數(shù),1μmol/mL=103nmol/mLN:細胞或細菌數(shù)量,以萬計;F:樣本稀釋倍數(shù)。

注意事項

1、 如果測定的吸光值或?A測定大于1.2,可以對樣本用蒸餾水進行稀釋或者縮短37℃酶促反應(yīng)時間;?A測定小于0.01,可以加大樣本量或者延長37℃酶促反應(yīng)時間。最終計算時同步修改計算公式。

實驗實例

1、 稱取0.1006g兔子肝臟組織,加入1mL提取液進行冰浴勻漿,將上清稀釋2按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得計算?A測定=A測定-A對照=0.824-0.038=0.786,?A標準=A標準-A標準空白=0.653-0.033=0.620,帶入公式計算:

TRAP活性(U/g 質(zhì)量)=10.42×?A測定÷?A標準÷W×F=262.622 U/g 質(zhì)量

2、 稱取0.1000g竹子葉,加入1mL提取液進行冰浴勻漿,將上清稀釋8按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得計算?A測定=A測定-A對照=0.656-0.045=0.611?A標準=A標準-A標準空白=0.653-0.033=0.620帶入公式計算:

TRAP活性(U/g 質(zhì)量)=10.42×?A測定÷?A標準÷W×F=821.499 U/g 質(zhì)量

3、 吸取0.05mL人血清,按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得計算?A測定=A測定-A對照=0.197-0.157=0.040,?A標準=A標準-A標準空白=0.653-0.033=0.620,帶入公式計算: 

TRAP活性(U/mL=10.42×?A測定÷?A標準×F=0.672 U/mL

參考文獻

[1] Megat R, Wahab A, Dasor M M, et al. Crevicular tartrate resistant acid phosphatase activity and rate of tooth movement under different continuous force applications[J]. African journal of pharmacy and pharmacology, 2011, 5(20):2213-2219.

[2] Natasˇa Mitic′, Mohsen Valizadeh, Eleanor W.W. Leung, et al. Human tartrate-resistant acid phosphatase becomes

an effective ATPase upon proteolytic activation [J]. Archives of Biochemistry and Biophysics 439 (2005) 154–164.

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